
# 瞬转 vs 稳转 #
细胞瞬时转染(瞬转)和稳定转染(稳转)是将外源核酸导入真核细胞的两种主要方式,核心区别在于外源基因是否整合到宿主基因组及表达持续时间。
瞬时转染:将外源DNA/RNA导入细胞后,这些遗传物质不整合到宿主细胞的基因组中。它们以游离的形式存在,随着细胞的分裂而逐渐被稀释、降解。
稳定转染:通过特定方法(如病毒整合或非同源末端连接),使外源DNA整合到宿主细胞的基因组中,或形成能在细胞分裂中长期稳定存在的染色体外附加体。

🔍应用场景及特点
瞬时转染:
快速功能验证:验证某个基因过表达或干扰后的短期表型。
报告基因实验:检测启动子活性、信号通路调控(如荧光素酶实验)。
蛋白质小规模生产:在HEK293T等细胞中快速生产重组蛋白或病毒载体。
CRISPR/Cas9基因编辑:将Cas9蛋白和gRNA瞬时导入细胞,进行基因敲除。
稳定转染:
建立稳定细胞系:用于长期研究基因功能(如致癌基因、耐药基因)。
蛋白质大规模生产:用于生物制药,生产治疗性抗体、激素等。
长期药物筛选:构建对特定药物敏感或耐药的细胞系,用于高通量筛选。
基因治疗研究:模拟基因在体内长期表达的效果。

🔍下游纯化挑战
细胞瞬转表达的抗体确实可能产生较多杂质,主要因为瞬转表达水平高、速度快,易导致错误折叠或组装的副产物。
主要杂质类型
•产物相关杂质:包括重链同二聚体、轻链错配产物、半抗体、3/4抗体及聚集体等;
•工艺相关杂质:宿主细胞蛋白(HCPs)、宿主细胞核酸(HCD)、培养基成分及脱落的配基等。
杂质产生原因
•瞬转表达量高、速度快,细胞折叠和组装能力超负荷,导致错误折叠或不完全组装的抗体增多;
•表达系统特性:如CHO细胞瞬转时凸起/孔洞重链共同表达,易形成同二聚体杂质。
杂质去除策略
可通过亲和力差异、电荷性等差异分离纯化

🔍实验选择建议
先瞬转,后稳转:在研究初期,通常先用瞬转验证基因的功能和表型。确认有效后,再投入时间和资源构建稳转细胞系进行深入机制研究。
根据目的决定:
如果是 “看一看”、“快筛” → 选短跑选手瞬转。
如果是 “长期用”、“深入研” → 选马拉松选手稳转。
考虑细胞类型:有些难转染的细胞(如原代细胞、神经元),可能只适合瞬转或必须使用病毒载体才能实现稳转。
简单来说,瞬转像是“短期租房”,快速方便但无法长久;稳转则是“买房落户”,过程繁琐但能一劳永逸地获得稳定的资产。根据你的实验目标和时间安排,选择最合适的技术路径。
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