前言
在ELISA实验过程中,我们往往关注抗体选择、实验操作等核心环节,却容易忽视一个至关重要的基础环节——样本前处理。合适的样本前处理不仅是实验成功的首要前提,更是保证结果准确性和可重复性的关键。
样本处理方法详解
血液样本处理
血液样本是ELISA检测中最常见的样本类型,根据处理方式不同分为血清和血浆两类:
血清样本制备
将全血室温放置20-30min,使其充分凝固
4℃ 1000×g离心10min,仔细收集上清
注意事项:如不能在24小时内检测,建议将血清分装多份,-20℃或-80℃保存,避免反复冻融。
血浆样本制备
用含抗凝剂的采血管或离心管采集血液标本
标本采集后30min内4℃ 1000×g离心15min,取上清即血浆
如不能在24小时内检测,建议将血清分装多份,-20℃或-80℃保存,避免反复冻融
注意事项:常用的抗凝剂有EDTA、肝素或柠檬酸盐,采集样本前应仔细阅读说明书,检查试剂盒是否对抗凝剂 有特殊要求。
细胞上清样本处理
将细胞培养上清液吸入离心管中,在4℃条件下,以1000×g离心20 min,除去细胞碎片和杂质,取上清,即可检测。
细胞裂解液制备
① 用冷的PBS轻轻清洗贴壁细胞,使用胰蛋白酶消化,1000×g离心5 min后收集细胞;悬浮细胞可直接离心收集;
② 将收集到的细胞用冷的PBS洗涤3次。加入PBS或者细胞裂解液,并通过反复冻融或超声使细胞破碎;
③ 将提取液于4°C,10000×g离心10 min,取上清检测。
组织样本处理
① 用预冷的PBS(0.01 M,pH 7.4)冲洗组织,除去表面残留的血液或杂质;
② 将组织块称重,再切成尽可能小的碎块,以便充分匀浆;
③ 加入适量的预冷PBS或者组织裂解液,用玻璃匀浆器在冰上或冰浴中充分匀浆。为了进一步裂解组织细胞,可以对匀浆液进行超声破碎,或反复冻融;
④ 将匀浆液吸入离心管中,4°C条件下,以5000×g离心5-10 min,取上清检测。
ELISA样本前处理常见问题解答 (FAQ)
1
样本收集时,有哪些需要特别注意的关键点以避免结果不准?
A: 样本收集是第一步,也是确保结果准确性的基础,需特别注意以下两点:
避免溶血:采集血液样本时应尽可能避免发生溶血。红细胞破裂释放的内容物可能会干扰后续的抗原抗体反应,导致检测值不准。
慎用高血脂样本:高血脂样本会影响溶液的均一性,并可能干扰抗原与抗体的结合过程,导致测值准确性降低,应尽量避免使用。
2
采集后的样本应如何正确保存?
A: 正确的保存方式对维持样本中待测物的稳定性至关重要。
短期保存:若样本在采集后1周内进行检测,可存放于4℃的冰箱中。
长期保存:若无法及时检测,请将样本按一次实验用量进行分装,并冻存于-20℃或-80℃环境中。务必避免反复冻融样本,以免蛋白降解影响结果。
检测前处理:实验前,建议将冻存的样本再次离心,取上清检测,以除去可能产生的沉淀物或杂质。
3
如果样本浓度过高,超出了标准品的检测范围怎么办?
A: ELISA试剂盒标注的检测范围是针对标准品的,并不等同于您样本的浓度范围。
如果样本中待测物浓度过高,则需要对样本进行适当倍数的稀释后再重新检测。
稀释倍数确定:建议通过查阅相关文献或进行预实验来摸索和确定合适的稀释倍数,以确保稀释后的样本浓度落在标准曲线的线性范围内。
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